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    马铃薯品质实验:马铃薯实验

    时间:2019-07-14 08:35:37来源:佩佩美文网 本文已影响 佩佩美文网手机站
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    马铃薯品质实验

    一. 不同施肥处理下叶绿素含量的变化

    上述五个废肥料处理下的不同时期叶绿素的变化情况(从2011。6.20开始每隔十天测定一次)

    二. 光合作用与产量的相关性 叶面积系数 乳酸脱氢酶活力的测

    定是植物体内糖代谢酵解途径的关键酶之一,硝酸还原酶是植物氮素同化的关键酶

    光合作用是植物生产力最主要的构成因素.在影响马铃薯光合速率的几个重要因素中,光合强度与CO2浓度是需要首要考虑的因子[2,3].笔者研究不同光合强度和CO2浓度对马铃薯叶片光合作用的影响,旨在通过改进马铃薯栽培技术来提高其产量和品质.

    2006年8月中旬在塑料大棚内用美国产的CI-301PS 光合测定仪于早上9∶00开始至下午4∶00测定净光合速率、细胞间隙二氧化碳浓度、气孔导度。本试验定甘薯叶片叶位时, 刚展开的叶片的叶位定为第1叶, 先展开的叶片叶位依次定为第2, 3, 4, 5叶。测定时, 每株从刚展开的第1叶开始, 每个叶片都测定, 每个品种随机重复3次。

    ECA-PB0402光合测定仪测定光合作用的相关数据气孔是植物与外界进行气体交换的孔道和控制蒸腾的结构,通过它的开闭,调控着植物的气体交换率和水分蒸腾率,所以气孔的形态特征和行为动态是植物光合生理和水分生理研究的一个重要方面。前人研究认为气孔密度与光合速率呈正相关关系,马铃薯叶片上下表皮气孔密度与淀粉含量呈极显著正相关关系[4],说明马铃薯叶片气孔作为重要的植物学性状,

    是观察和记载的光合生理指标之一。

    三. 植物学特性与产量的关系

    测定植物的叶面积指数等等

    四. 根系活力与产量的相关性

    马铃薯根系吸收活力越大, 其相应的生物产量和块茎产量就越高。马铃薯的抗旱性表现为加性遗传的特性, 并且根系拉力与块茎产量呈显著正相关; 马铃薯伤流液的数量和成分, 可作为根系活动能力强弱的生理指标, 其根系吸收活力是根的重量、数量和根系吸水、输水性能的综合表现, 因此探讨不同品系马铃薯根系吸水活力之间的差异以及与产量之间的关系, 对选育抗旱、高产、优质的马铃薯新品种有一定的指导意义。

    五. 花芽分化时间与产量的相关性

    早花是在某些特殊条件下,植株未达到该品种或当地栽培条件下应有的株高和叶片数时便加速完成生长发育进程而过早开花,是烟株生长与发育异常的结果。花芽分化是植物从营养生长转向生殖生长的标志

    [1-3]。烟草是一种叶用作物,花芽分化起始的早晚,不仅影响到烟株的有效叶数和烟叶产量[4-9],而且会对烟叶品质产生重大影响

    [10-11]。通过对烟草花芽的解剖观察可以提早了解烟株的生长进程,对早花烟株的出现可采取

    六. 土壤中全氮全磷全钾与植物体中全氮全磷全钾及块茎中全氮全

    磷全钾的相关性

    七. 后期品质指标测定:维生素含量、蛋白质含量、淀粉含量、还

    原糖含量

    6、4、1淀粉含量的测定(碘比色法)

    称取粉碎干样品(块茎0.1g ,茎叶0.5g ,如果取鲜样测块茎取0.5-1g ,茎叶取5g) ,放在50mL 烧杯中,加蒸馏水2mL ,调成糊状,在搅拌中加入3.2mL60%高氯酸,继续搅拌10分钟,然后用蒸馏水洗入到100mL 容量瓶,加水定容至刻度并摇匀,静止或离心后取上清液0.5mL 加入刻度试管中,加水3mL ,再加碘试剂2mL 摇动,放置5分钟,定容至10mL ,以蒸馏水作对照,放在波长660nm 滤光镜下比色,得到不同光密度(若蓝色过深,应稀释后再加碘试剂,作用后比色,如不立即比色,不要事先稀释,可在比色前再稀释) ,再用下式计算可得淀粉含量:

    淀粉含量(%)=

    样重⨯r 1

    100⨯0. 5

    10⨯106⨯100

    r :标准曲线上查出的浓度(mg/kg)

    6、4、2 蛋白质含量的测定(考马斯亮蓝染色法)

    1、蛋白质标准溶液的制备:精确称取牛血清白蛋白10.00 mg ,用少量蒸馏水溶解定容至100mL ,即为0.1mg/mL蛋白质标准液,4℃-5℃冰箱中保存。

    2、考马斯亮蓝G-250溶液的制备:精密称取考马斯亮蓝G-250 100.00 mg 加入95%乙醇50mL ,再加入85%磷酸100mL ,最后用蒸馏水定容至1000mL ,最终试剂含0.01%考马斯亮蓝G-250,4.7%乙醇,8.5%磷酸,置于棕色瓶中备用。

    3、供试品溶液的制备:精确称取马铃薯干样品100.00mg ,加蒸馏水

    溶解定容至100mL ,即为1mg/mL供试品溶液。

    4、标准曲线的制作:分别精密吸取标准蛋白质溶液0.0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.5、0.7、0.8、0.9、1.0mL 于10 mL具塞试管中,各管加水至1mL ,加入考马斯亮蓝G-250溶液5mL ,混匀,放置10min ,于595nm 处测定其吸光度。

    5、样品中蛋白质含量的测定:取供试品溶液各1mL ,同时做三个重复,以空白试剂为参比,按上述标准曲线的测定法,分别测定其吸光度值,计算样品中蛋白质的含量。

    6、4、3 还原糖含量测定(3,5-二硝基水杨酸比色法)

    制作葡萄糖标准曲线:取7支具有25mL 刻度的血糖管或刻度试管,编号,按下表所示的量,精确加入浓度为lmg/mL的葡萄糖标准液和3,5-二硝基水杨酸试剂。

    将各管摇匀,在沸水浴中加热5min ,取出后立即放人盛有冷水的烧杯中冷却至室温,再以蒸馏水定容至25mL 刻度处,用橡皮塞塞住管口,颠倒混匀(如用大试管,则向每管加入21.5mL 蒸馏水,混匀)。在540nm 波长下,用0号管调零,分别读取l-6号管的消光值。以消光值为纵坐标,葡萄糖毫克数为横坐标,绘制标准曲线,求得直线方表。

    各试管加溶液和试剂的量

    (1)样品中还原糖的提取:准确称取15g 马铃薯块茎鲜样,研成糊状,放在100mL 的烧杯,然后加50mL 蒸馏水,搅匀,置于50℃恒温水浴中保温20min ,使还原糖浸出。离心或过滤,用20mL 蒸馏水洗残渣,再离心或过滤,将两次离心的上清液或滤液全部收集在100mL 的容量瓶中,用蒸馏水定容至刻度,混匀,作为还原糖待测液。

    (2)显色和比色:取3支25mL 刻度试管,编号,分别加入还原糖待测液2mL ,3,5-二硝基水杨酸试剂1.5mL ,其余操作均与制作标准曲线相同,测定各管的消光值。分别在标准曲线上查出相应还原糖毫克数,按下式计算还原糖百分含量:

    还原糖(%)=a

    W ⨯1000C ⨯V ×100

    式中 C —标准曲线方程求得的还原糖量(mg);

    V —提取液的体积(mL);

    a —显色时吸取样品液体积(mL);

    W —样品重(g)。

    6、4、4 块茎维生素C 含量的测定

    (1)样品的称取Vc 在块茎不同部位含量不同,块茎顶部最多,脐部少,茎皮与髓部少,而维管周围较多;而且不同植株不同块茎之间变化也较大。因此,平均试样非常重要。一般至少取15-20个洗净的块茎的试样配成。具体方法是:先将块茎纵切,并切下厚度约0.5cm 的薄片。在每一半块茎中部与第一切口垂直方向切取另外二个薄片,将获得的薄片迅速切碎,再从其中取出10g 放在玻璃面上。

    (2)将所取样品放入捣碎机或研钵中,加入20mL 1%盐酸迅速研磨成匀浆状(在10min 内很快研磨) ,把获得的匀浆洗入容量100mL 的量瓶里,用1%草酸溶液冲洗几次倒入容量瓶,并用草酸定容至刻度,

    用力摇动,并放置5min 左右,然后将瓶内容物过滤。如果滤液色深可用白陶土脱色。

    (3)从获得滤液中取液10mL ,用微量滴定管以2,6-二氯酚标准液滴定至粉红色,保持一分钟不退色为止,记下用去的2,6-D 的数量。

    (4)提取样品的混合酸液及其还原物质还原能力的校正值:

    取1%盐酸和l%草酸各10mL 混合,用同样的染料溶液滴定至粉红色为止,从试验溶液的滴定材料中,减去酸液滴定值即为所测材料的实际滴定值。

    由于提取液可能含有某些数量的其它还原物质,这些物质和染料起反应,使分析的数字增大。为了精确分析,也要计算这些物质。因此,在10mL 提取液中,加入0.1mL 10%的硫酸铜溶液,并在烘箱里加热l0min ,冷却后用同样染料溶液进行滴定。因为有铜时破坏了Vc ,因此滴定的结果则表示滤液的还原力,这种情况下不必测定提取液用酸的滴定量校正数了。

    计算:

    (a -b ) T

    Vc(mg/l00g鲜样重)=10

    10⨯100⨯100

    a —滴定供试液10mL 所消耗染料的毫升数

    b —校正值

    T —为0.112mg(Vc)/mL 2,6-D

    3 试验安排

    试验时间:2011年4月至2011年10月。

    室内安排:

    室外考察

    马铃薯种植时间为2011年4月18日。施用肥料为化肥和农家

    肥。

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